MicroRNAs(miRNAs)作為非編碼的小分子RNA,在細(xì)胞生長、分化、增殖和凋亡等過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用。在血液和癌細(xì)胞系中作為癌癥診斷生物標(biāo)志物具有巨大潛力,尤其是在乳腺癌中的異常表達(dá)對診斷、發(fā)病及治療干預(yù)有重要意義。然而,傳統(tǒng)的miRNA檢測方法如Northern blot存在靈敏度不足、需要大量樣本等局限性,而現(xiàn)有的CRISPR/Cas系統(tǒng)在臨床診斷中的應(yīng)用也面臨一些挑戰(zhàn),如依賴熱循環(huán)的PCR方法操作復(fù)雜、等溫擴增方法存在背景信號高和特異性低等問題。因此,開發(fā)一種快速、靈敏、特異且操作簡便的miRNA檢測方法具有重要意義。
1)LRPA-CRISPR檢測miRNA-21的原理
圖1描述了LRPA-CRISPR檢測miRNA-21的原理。在miRNA-21存在的情況下,利用T4 DNA連接酶將兩個DNA探針快速、特異、高效地連接在miRNA-21上。引入DNA聚合酶,在RNA/DNA雙鏈中擴增DNA鏈并釋放miRNA,從而防止在隨后的反應(yīng)中暴露于Cas12a反式切割。同時,miRNA-21可以進一步與新探針雜交,激活下一輪T4 DNA結(jié)扎反應(yīng),并提供靶循環(huán)激活的信號放大。DNA聚合酶促進正向引物和反向引物在兩個方向上的延伸,從而產(chǎn)生dsDNA擴增子。Anti-Mango-crRNA被完整編程的dsDNA擴增子轉(zhuǎn)錄,并在Cas12a蛋白的加工下加工成熟的crRNA,為Cas12a順式切割反應(yīng)提供支持。通過同時連接高度特異性的crRNA識別序列,擴增的dsDNA擴增子能夠觸發(fā)CRISPR/Cas12a的靶向順式切割活性。同時,切割的dsDNA擴增子在T7 RNA聚合酶的作用下轉(zhuǎn)錄生成Mango RNA用于信號輸出。Mango RNA適配體與TO1 -生物素?zé)晒鈭F之間具有高親和力,豐富的功能性Mango RNA的轉(zhuǎn)錄達(dá)到了顯著的信號放大。通過編程miRNA-21的探針序列,LRPA-CRISPR可以在等溫方式下檢測其他類型的microRNA。
圖1:LRPA-CRISPR法檢測miRNA示意圖
2)傳感器可行性驗證
將LRPA系統(tǒng)和Cas12a順式切割系統(tǒng)誘導(dǎo)的程序化轉(zhuǎn)錄進行級聯(lián),驗證LRPA-CRISPR實驗的整體可行性(圖2A)。通過凝膠電泳驗證miRNA-21觸發(fā)LRPA系統(tǒng)的識別(圖2B),表明miRNA-21可以觸發(fā)Mango探針和Anti-Mango探針在lane 6組裝穩(wěn)定的三聯(lián)物,T4 DNA連接酶高效地進行Mango探針和Anti-Mango探針的連接。dsDNA擴增產(chǎn)物加入了RPA反應(yīng)體系,驗證了等溫擴增反應(yīng)的有效性。Cas12a順式切割系統(tǒng)在lane 3中產(chǎn)生功能性Mango RNA,而lane 2只產(chǎn)生Anti-Mango RNA(圖2C)。同時,實驗組熒光強度顯著增加,而其他組無明顯變化(圖2D)。
圖2:(A) Cas12a順式裂解體系示意圖。(B)連接識別觸發(fā)RPA系統(tǒng)的10% PAGE驗證。(C) Cas12a順式裂解激活體系的10% PAGE驗證。(D)典型熒光反應(yīng)對LRPA-CRISPR檢測的驗證。
實際樣本檢測
研究LRPA-CRISPR單步檢測miRNA在癌癥鑒定和預(yù)測中的可行性。在乳腺癌患者血漿和細(xì)胞樣本中,該方法成功檢測到了miRNA-21的表達(dá)水平(圖6A),并且與實時熒光定量PCR(RT-qPCR)的結(jié)果高度一致。從四種不同的細(xì)胞系中獲得樣品,定量miRNA-21水平,與MCF-10A細(xì)胞系樣本相比,HepG2、MCF-7和HeLa細(xì)胞系樣本中的miRNA-21水平顯著升高(圖6B)。從乳腺癌患者和健康對照者的血漿樣本中分離總RNA用于定量miRNA-21,實時評估熒光強度,在乳腺癌患者樣本中觀察到的熒光信號強度超過了健康個體的樣本(圖6C和D)。
圖6.所示。一鍋法檢測臨床樣品中miRNA的臨床應(yīng)用。(A)使用RT-qPCR和本方法測量的人血漿樣品和細(xì)胞樣品中miRNA檢測步驟示意圖。(B) RT-qPCR檢測HepG2、MCF-7、HeLa和MCF-10A細(xì)胞系中提取的miRNA-21與該方法在生物傳感中的應(yīng)用比較。(C)使用RT-qPCR和本方法測量的miRNA-21濃度熒光信號水平的熱圖。(D)采用該方法(藍(lán)色)和RT-qPCR(黑色)分析患者和健康樣本中miRNA-21的表達(dá)水平。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示(n = 3)。
文章總結(jié)了一鍋法LRPA-CRISPR熒光生物傳感器作為一種快速、靈敏、特異且操作簡便的miRNA檢測方法,具有顯著的優(yōu)勢。它不僅提高了檢測的靈敏度和特異性,還大大簡化了檢測流程,降低了檢測成本,為miRNA的臨床診斷提供了一種新的策略。然而,作者也指出,盡管該方法在科學(xué)實驗和臨床應(yīng)用中表現(xiàn)出良好的性能,但熒光RNA適配體基生物傳感器仍需要特定的光譜分析,限制了其在臨床診斷中的大規(guī)模應(yīng)用。
創(chuàng) 新 點:
一鍋法檢測平臺:將重組酶聚合酶擴增(RPA)與CRISPR/Cas12a順式切割系統(tǒng)相結(jié)合,開發(fā)出一種一鍋法熒光生物傳感器,實現(xiàn)了miRNAs的檢測。這種一鍋法設(shè)計避免了傳統(tǒng)方法中多個獨立的預(yù)擴增和CRISPR介導(dǎo)的信號輸出步驟,大大簡化了實驗流程,縮短了檢測時間。
自供crRNA機制:利用Cas12a的前crRNA處理活性,將由完整dsDNA擴增子轉(zhuǎn)錄的Anti-Mango-crRNA加工成熟crRNA,實現(xiàn)了crRNA的自供應(yīng),提高了檢測的效率和特異性。
順式切割機制的應(yīng)用:以往的CRISPR/Cas12a診斷方法多依賴于反式切割進行信號放大,但容易導(dǎo)致假陽性。而本文利用Cas12a的順式切割機制,結(jié)合轉(zhuǎn)錄擴增策略,生成功能性Mango RNA,實現(xiàn)了信號輸出,避免了反式切割帶來的假陽性問題。
無標(biāo)記檢測:該方法無需對miRNA進行標(biāo)記,降低了檢測成本,提高了檢測的通用性和便捷性。
相關(guān)產(chǎn)品:RPA試劑盒及試紙條系列:
貨號 |
產(chǎn)品 |
規(guī)格 |
B8201C1 |
DNA恒溫快速擴增試劑盒(DNA基礎(chǔ)型) |
48T |
B8202C3 |
DNA恒溫快速擴增試劑盒(DNA熒光型) |
48T |
B8203C5 |
DNA恒溫快速擴增試劑盒(DNA試紙條型) |
48T |
B8204C7 |
RNA恒溫快速擴增試劑盒(RNA基礎(chǔ)型) |
48T |
B8205C9 |
RNA恒溫快速擴增試劑盒(RNA熒光型) |
48T |
B8206C0 |
RNA恒溫快速擴增試劑盒(RNA試紙條型) |
48T |
JY0209 |
雙靶標(biāo)HybriDetect側(cè)向?qū)游鲈嚰垪l(彩虹型) |
50T |
JY0201 |
單靶標(biāo)HybriDetect側(cè)向?qū)游鲈嚰垪l(彩虹型) |
50T |
JY0307 |
CRISPR單酶切及擴增產(chǎn)物檢測試紙條 |
50T |
JY0301 |
CRISPR Cas12/13 HybriDetect試紙條 |
50T |
JY0308 |
CRISPR雙酶切檢測試紙條(變色龍) |
50T
|
Cas酶系列
貨號 |
包裝規(guī)格 |
中文名稱 |
32108-01 |
100 pmoL |
LbCas12a (Cpf1) |
32108-03 |
1,000 pmoL |
LbCas12a (Cpf1) |
32117-01 |
100 pmoL |
LwaCas13a (C2c2) |
32117-03 |
1,000 pmoL |
LwaCas13a (C2c2) |
32118-01 |
100 pmoL |
AapCas12b (C2c1) |
32118-03 |
1,000 pmoL |
AapCas12b (C2c1) |
32119-01 |
100 pmoL |
Un1Cas12f1 (Cas14a1) |
32119-03 |
1,000 pmoL |
Un1Cas12f1 (Cas14a1) |
32104-01 |
100 pmoL |
AsCas12a (Cpf1) |
32104-03 |
1,000 pmoL |
AsCas12a (Cpf1) |
32116-01 |
100 pmoL |
AacCas12b (C2c1) |
32116-03 |
1,000 pmoL |
AacCas12b (C2c1) |
32106-01 |
100 pmoL |
FnCas12a (Cpf1) |
32106-03 |
1,000 pmoL |
FnCas12a (Cpf1) |
32110-01 |
100 pmoL |
Lb5Cas12a (Cpf1) |
32110-03 |
1,000 pmoL |
Lb5Cas12a (Cpf1) |
32101-01 |
100 pmoL |
SpCas9 |
32101-03 |
1,000 pmoL |
SpCas9 |
32102-01 |
100 pmoL |
Sp-dCas9 |
32102-03 |
1,000 pmoL |
Sp-dCas9 |
32120-01 |
100 pmoL |
Sp-nCas9(H840A) |
32120-03 |
1,000 pmoL |
Sp-nCas9(H840A) |
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